貼壁細胞在培養(yang) 時要貼附於(yu) 培養(yang) (瓶)器皿壁上,細胞一經貼壁就迅速鋪展,然後開始有絲(si) 分裂,並很快進入對數生長期。
傳(chuan) 代後細胞全部飄起
解決(jue) 方法:檢查所使用的培養(yang) 基的顏色是否偏紫色(如圖1),檢查瓶蓋是否透氣,不透氣瓶蓋是否被擰鬆。
圖1. 培養(yang) 基顏色偏紫
通常培養(yang) 基偏堿,顏色就會(hui) 偏紫,主要是因為(wei) 培養(yang) 基裏的酚紅指示劑遇酸變黃、遇堿變紫,培養(yang) 基量太少,或培養(yang) 基存放時間太長時都會(hui) 變堿。建議配好完-全培養(yang) 基後分裝到50mL離心管並於(yu) 一周內(nei) 用完,量少時放到15mL離心管裏保存。
傳(chuan) 代後部分細胞漂浮
原因及解決(jue) 方法如下
傳(chuan) 代前細胞密度太大:一般細胞匯合度達到80%時可進行傳(chuan) 代操作,傳(chuan) 代密度需適中,傳(chuan) 代密度過高也會(hui) 導致傳(chuan) 代後漂浮;
細胞狀態不好:可通過提高血清比例、穩定培養(yang) 環境等方法進行改善;
吹打次數過多造成機械損傷(shang) :輕柔吹打,細胞呈單顆粒時可停止吹打,吹打過程避免氣泡產(chan) 生;
培養(yang) 基更換後不適應:更換回原來的培養(yang) 基;或者與(yu) 原培養(yang) 基比例混合後使用,使細胞有個(ge) 適應期。
傳(chuan) 代後細胞變形
原因及解決(jue) 方法如下
1)變形,但細胞還在生長:可能是血清批次不一樣導致,血清成分複雜,不同批次和品牌間均存在成分差異,影響細胞狀態。建議使用同一批次血清,更換血清時需與(yu) 原血清比例混合後使用,使細胞有過渡期;
2)變形,但細胞不長,且碎片增多:可能傳(chuan) 代操作過程損傷(shang) ,常見於(yu) 消化不當,或者潛在支原體(ti) 等汙染導致細胞病態;消化時間根據每個(ge) 細胞的狀態來調整,消化過度或者消化不充分均會(hui) 對細胞造成影響;培養(yang) 過程應嚴(yan) 格無菌操作,實驗環境盡量潔淨,確保細胞無外源汙染。
細胞生長周期變慢,邊養(yang) 邊漂
原因及解決(jue) 方法如下
細胞傳(chuan) 代時密度太稀或太密:建議細胞密度達80%左右進行傳(chuan) 代,傳(chuan) 代密度適中,密度過低會(hui) 延長生長周期;
傳(chuan) 代操作不當:根據細胞特性決(jue) 定細胞消化時間,一般在顯微鏡下觀察細胞回縮變圓並有少量細胞脫落即可終止消化,難消化的細胞可分次消化,每次時間不超過5min;頻繁換液或者清洗細胞也會(hui) 導致細胞狀態變差,常規換液時間間隔為(wei) 2~3天。
傳(chuan) 代後細胞成團
解決(jue) 方法如下
低密度接種,延長換液時間,防止細胞脫落;
使用多聚賴氨酸包被培養(yang) 器皿,以增加細胞貼壁牢固度,降低細胞聚集成團的幾率;
重新鋪板,並更換新配製的培養(yang) 基,加大血清比例(增加比例不超過5%);
接種時,減少培養(yang) 基量(如T25加3mL)以加快細胞貼壁速度,等待細胞貼壁後(約8-12小時),再補加培養(yang) 基到正常用量。
細胞出現空泡
原因及解決(jue) 方法如下
1)正常的細胞活動:有的細胞有正常的自噬行為(wei) 或其他膜泡活動,無需特殊處理(如Caco-2細胞);
2)血清不適應、培養(yang) 基成分改變、換液不及時等造成細胞營養(yang) 不良:可通過更換更合適的血清或及時換液等方法解決(jue) ;
3)機械損傷(shang) 、PH偏高或偏低等造成細胞受損:注意培養(yang) 條件及操作手法。