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細胞學堂 | 一文了解細胞爬片製作全過程

更新時間:2024-04-17  |  點擊率:1572


圖片

細胞爬片是一種將細胞培養(yang) 在玻璃或塑料表麵上,使其附著並擴展的技術。一般是讓玻片浸在細胞培養(yang) 基內(nei) ,使細胞在玻片上生長。這種技術可以用於(yu) 觀察細胞形態、運動、細胞與(yu) 細胞之間相互作用等。利用細胞爬片進行體(ti) 外實驗可排除體(ti) 內(nei) 諸多幹擾因素的影響,方便對細胞進行各種幹預處理。


我們(men) 在做免疫熒光(IF)、原位雜交(FISH)、凋亡檢測(TUNEL)等實驗時,都需要製備細胞爬片,而爬片質量會(hui) 影響到最後的圖片呈現效果以及實驗數據的精準性。本期細胞學堂為(wei) 大家整理了細胞爬片的製作步驟及注意事項,幫助您快速上手開展實驗。





操作步驟


01

爬片準備

1

根據實驗選擇合適大小的爬片。

2

爬片處理,首先浸酸:5%稀鹽酸浸泡過夜(最好逐片浸入,多片同時浸入會(hui) 引起多片粘連、浸洗不充分),第二天先用自來水衝(chong) 洗20次,再用三蒸水衝(chong) 洗2次(清除殘留酸液)

3

將爬片置於(yu) 無水乙醇浸泡過夜(浸洗脂類汙漬),75%乙醇長期保存備用(無需高壓滅菌)。使用時鑷子取出爬片,酒精燈烘烤,放入孔板。


02

細胞爬片

1

收集貼壁細胞進行計數,按照實驗需求用完-全培養(yang) 基稀釋細胞至合適濃度。

2

加細胞前,先在每個(ge) 孔裏準備放爬片的位置滴加少量培養(yang) 基(目的是使爬片與(yu) 培養(yang) 皿靠液體(ti) 的張力粘合到一起),然後輕放爬片(注意不要產(chan) 生氣泡,防止加細胞懸液時爬片漂起)整個(ge) 過程注意無菌操作。

3

根據實驗需求接種合適細胞量到培養(yang) 器皿內(nei) 。


03

爬片的固定

固定液的選擇:

1)多聚甲醛(常用4%)

可用於(yu) 免疫電鏡、免疫組化、免疫熒光以及TUNEL染色等。室溫固定15~30 min後可進行後續實驗。


2)4%中性甲醛:

又名“10%中性福爾馬林",應用廣泛,常用於(yu) 免疫組化、免疫熒光以及TUNEL染色等。形態結構保存好,且穿透性強,但甲醛放置過久可氧化為(wei) 甲酸,使溶液pH降低,影響染色;分子間交聯形成的網格結構可能部分或完-全掩蓋某些抗原決(jue) 定簇,使之不能充分暴露,可能造成假陰性的染色結果。室溫固定15~30 min後可進行後續實驗。


3)其他

如冷丙酮、75%~95%乙醇等,具體(ti) 的以實驗要求為(wei) 準。


以多聚甲醛為(wei) 例進行固定:

1

準備4%多聚甲醛(PFA),於(yu) 4℃冰箱中保存,使用時常溫複溫。

2

在培養(yang) 板中將已爬好細胞的爬片用PBS浸洗3次,每次3 min,輕輕晃動,避免將細胞衝(chong) 掉。

3

用4%的多聚甲醛固定爬片15 min(細胞自帶熒光時注意避光),PBS浸洗爬片3次,每次3 min

4

Triton X-100(PBS配製,濃度根據實驗調整)室溫通透20 min

5

PBS浸洗爬片3次,每次3 min

6

按實驗需求進行後續實驗。




04

細胞爬片封片

封片前根據實驗需求決(jue) 定是否需要孵育抗體(ti) 或複染核。孵育好後用PBS浸洗3次,用吸水紙吸幹爬片上的液體(ti) ,封片液封片。






注意事項

固定好的細胞爬片建議盡快用於(yu) 實驗,以免影響實驗效果。

取爬片時注意控製力度,夾取時盡量夾取爬片邊緣,以免夾破爬片或造成劃痕。

細胞爬片取出後,一般用PBS潤洗3遍(潤洗操作盡量輕柔,以免細胞脫壁;根據研究目的,可調整潤洗次數,避免細胞脫壁),然後做固定。

對於(yu) 貼壁性較差的細胞,可提前用包被液(明膠,多聚賴氨酸,鼠尾膠原等)包被爬片。

如果細胞帶有熒光標記,所有操作步驟盡量在較暗處進行。

常見孔板細胞爬片(圓形)大小參考:

爬片尺寸

配套孔板

直徑12 mm,厚度0.13~0.17 mm

24孔板

直徑18 mm,厚度0.13~0.17 mm

12孔板

直徑22 mm,厚度0.13~0.17 mm

6孔板







注:各個(ge) 實驗室的操作流程都各有差異。此方案是我們(men) 實踐驗證可行的方案。




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